ivis成像系统(in vivo imaging system),作为一种先进的活体光学成像技术,革新了生物医学研究中对细胞和分子事件的实时、非侵入性监测能力。它主要通过检测生物体内特异性表达的荧光或生物发光信号,为科学家提供了前所未有的视角,去观察疾病进展、药物作用机制以及基因表达等动态生物过程。

ivis成像系统:究竟“何”物?

ivis成像系统是一种高度集成的活体光学成像平台,其核心在于能够捕获和量化来自活体生物(主要是小型动物如小鼠、大鼠)内部的微弱光信号。它突破了传统体外实验的局限,实现了对完整生物体内的细胞、基因、蛋白乃至组织器官功能状态的长期、动态监测。

核心成像原理与模式

ivis系统主要利用以下几种光学成像模式:

  • 生物发光成像 (Bioluminescence Imaging, BLI): 这是ivis最常用也最具代表性的模式。它依赖于生物体内表达的荧光素酶(如萤火虫荧光素酶、海肾荧光素酶等)与底物(如D-荧光素)发生反应,产生化学光。这种光是非侵入性地从生物体内部发出,无需外部光源激发,背景信号极低,因此具有极高的灵敏度。它常用于追踪肿瘤细胞生长、细菌感染、基因表达或细胞迁移等。
  • 荧光成像 (Fluorescence Imaging, FLI): 荧光成像需要外部光源(如卤素灯、LED阵列)激发,使生物体内的荧光报告基因(如GFP、RFP等)或荧光染料发出特定波长的荧光。系统通过滤光片选择性地接收这些荧光信号,去除激发光,从而成像。荧光成像的优势在于可以选择多种荧光探针,实现多色成像,但其背景信号相对生物发光高,且光在生物组织内衰减和散射较为显著。
  • 化学发光成像 (Chemiluminescence Imaging, CLI): 与生物发光类似,化学发光也是由化学反应产生的光,但通常不涉及酶。例如,某些氧化还原反应或辣根过氧化物酶(HRP)与特定底物反应产生的光。在活体成像中相对较少直接应用,但原理相通。

系统核心组件

一个完整的ivis成像系统通常包含以下关键组件:

  • 光密成像箱: 提供一个全黑、光线隔离的环境,以最大限度减少外部光线干扰,确保捕获到活体内部的微弱光信号。通常集成有动物麻醉接口。
  • 超灵敏冷却CCD/EMCCD相机: 这是捕获光信号的核心部件。这些相机经过深度冷却(通常达到-90°C甚至更低),以显著降低热噪声,从而提高信噪比,使其能够检测到极低强度的光子信号。
  • 高效率光学透镜: 用于收集从活体发出的光子,并将其聚焦到相机传感器上。通常配备可变光圈和焦距,以适应不同的成像需求。
  • 多种激发光源与发射滤光片: 主要用于荧光成像。激发光源提供特定波长的光来激发荧光探针,而发射滤光片则只允许荧光探针发出的光通过,阻挡激发光。生物发光成像则无需激发光源,只需相应的发射滤光片(用于光谱分离)。
  • 动物麻醉系统: 由于活体成像需要动物保持静止,通常集成有气体麻醉设备(如异氟烷),确保动物在成像过程中安全、稳定。
  • 温控平台: 维持动物体温稳定,避免低温应激对生理状态和信号强度的影响。
  • 专业图像采集与分析软件: 这是ivis系统的“大脑”,负责控制相机参数、数据采集、图像处理、信号量化(如光子通量)、三维重建以及多模态图像融合等功能。

为何选择ivis成像系统?

ivis成像系统之所以受到广泛青睐,在于其独特的技术优势,解决了传统研究方法的诸多痛点。

核心优势

  1. 非侵入性与实时监测: 这是ivis最突出的优点。无需手术,即可在不损伤动物的前提下,动态观察生物过程,大大减少了动物的痛苦和应激反应,也避免了手术带来的假象。
  2. 活体长期纵向研究: 同一只动物可以反复进行成像,在不同时间点收集数据,从而实现对疾病进展、治疗效果或细胞命运的长期、连续追踪。这极大地减少了实验动物的使用量,并降低了批次间差异,提高了数据的可靠性。
  3. 高灵敏度与高通量: 特别是生物发光成像,由于背景信号极低,能检测到极少量细胞或分子产生的信号。系统通常能同时成像多只动物(如5-10只),提高了实验效率。
  4. 定量分析: 通过专业的软件,可以对捕获的光信号进行精确的定量,如计算光子通量(photons/second/cm²/steradian),从而反映报告基因的表达水平、肿瘤的大小或病原体的数量,实现从定性到定量的飞跃。
  5. 多维度数据获取: 除了二维平面图像,一些先进的ivis系统还能进行三维断层成像(Diffuse Luminescence Tomography, DLT或Diffuse Fluorescence Tomography, DFT),提供信号在体内的精确空间定位。

典型应用领域

ivis成像系统在生命科学和药物研发的多个领域发挥着不可替代的作用:

  • 肿瘤生物学与抗癌药物研发:
    • 实时追踪肿瘤生长、转移、复发。
    • 评估抗肿瘤药物的体内药效和治疗响应。
    • 监测肿瘤微环境、免疫细胞浸润等。
  • 感染性疾病与疫苗研究:
    • 追踪病原体(细菌、病毒、真菌)在体内的感染和播散路径。
    • 评估抗感染药物的疗效。
    • 监测宿主免疫反应和疫苗保护效果。
  • 基因治疗与细胞治疗:
    • 监测基因表达载体(如病毒载体)的体内转导效率和组织分布。
    • 追踪干细胞、免疫细胞(如CAR-T细胞)在体内的存活、迁移和靶向能力。
  • 炎症与免疫学研究:
    • 监测体内炎症反应的发生、发展和消退。
    • 追踪免疫细胞(如T细胞、巨噬细胞)的活化和归巢。
  • 神经科学:
    • 监测脑部肿瘤生长、神经炎症、神经退行性疾病模型中的分子事件。
    • 评估神经保护药物的疗效。
  • 药物代谢动力学(PK)与药效学(PD):
    • 示踪药物在体内的分布、富集和清除。
    • 实时监测药物对靶标的结合和功能影响。

ivis成像系统应用于“何”处?

ivis成像系统因其独特优势,已成为现代生物医学研究和药物开发中不可或缺的工具,广泛应用于世界各地的科研机构、制药企业和生物技术公司。

主要应用机构

  • 高等院校与科研院所: 绝大多数生命科学、医学、药学等领域的大学实验室和国家级科研机构都配备或共享ivis成像系统,用于基础研究,探索疾病机制、细胞行为、基因功能等。
  • 大型制药公司: 在新药研发的早期阶段,特别是临床前研究中,ivis系统被广泛用于高通量筛选、药物药效评价、生物利用度评估以及毒理学研究,加速药物从靶点验证到临床候选物的推进。
  • 生物技术公司 (Biotech Firms): 专注于基因治疗、细胞治疗、新型生物制剂等领域的生物技术公司,常利用ivis系统来验证其治疗策略的体内效果,追踪细胞或基因载体的体内分布和功能。
  • 合同研究组织 (CROs): 许多CRO公司提供临床前研究服务,ivis成像作为其核心技术平台之一,为客户提供专业的活体成像数据支持。
  • 医院与临床转化研究中心: 随着转化医学的兴起,部分大型医院的科研部门或转化研究中心也开始引入ivis系统,用于连接基础研究与临床应用,例如评估新型诊疗方案的体内效果。

典型应用场景举例

场景一:抗肿瘤药物筛选

某制药公司研发了一系列新型抗癌化合物。他们将人源肿瘤细胞(稳定转染荧光素酶报告基因)接种到免疫缺陷小鼠体内,建立皮下或原位肿瘤模型。在小鼠肿瘤形成后,随机分组并给予不同剂量的化合物或对照。每周通过ivis系统对小鼠进行活体生物发光成像。通过比较各组肿瘤光信号强度的变化,可以直观、定量地评估不同化合物的抑瘤效果,并筛选出最有潜力的候选药物进入后续研发阶段。

场景二:CAR-T细胞治疗效果评估

某生物技术公司正在开发针对实体瘤的CAR-T细胞疗法。他们将表达荧光素酶的靶肿瘤细胞注射到小鼠体内形成肿瘤,然后将通过慢病毒转染了荧光素酶(或其他荧光蛋白)的CAR-T细胞回输给小鼠。通过ivis成像系统,研究人员可以同时追踪肿瘤的消退(肿瘤细胞发光减弱)和CAR-T细胞在体内的归巢、增殖和清除肿瘤的过程(CAR-T细胞发光增强并聚集在肿瘤部位),从而全面评估CAR-T细胞的体内抗肿瘤活性和持久性。

“如何”操作与成像?

ivis成像的操作流程看似复杂,但一旦熟悉,便能高效获取高质量数据。其核心在于严谨的样本准备、精确的仪器设置和专业的图像分析。

实验准备阶段

  1. 报告基因的选择与表达:
    • 生物发光: 选择合适的荧光素酶基因(如luc2、Fluc等),通过慢病毒、腺病毒、转基因或CRISPR/Cas9等技术将其稳定导入目标细胞(如肿瘤细胞、免疫细胞)或构建转基因动物模型。
    • 荧光: 选择合适的荧光蛋白基因(如GFP、RFP、mKate等)或通过特定途径(如静脉注射、口服、局部给药)引入荧光染料(如ICG、Cy5.5等)。
  2. 动物模型建立: 根据研究目的,建立相应的疾病动物模型,如肿瘤模型(皮下、原位、转移)、感染模型、炎症模型等。确保动物健康状况良好,符合伦理要求。
  3. 底物或探针准备:
    • 生物发光: 准备荧光素酶的底物(如D-荧光素,通常溶于PBS或生理盐水),使用前新鲜配制。
    • 荧光: 准备荧光探针或染料,确保其溶解性、稳定性和特异性。
  4. 仪器预热与参数设置: 提前开启ivis系统和麻醉设备进行预热。根据实验设计,确定成像模式(BLI/FLI)、曝光时间、binning设置、滤光片选择、视野大小等参数。

成像操作流程

  1. 动物麻醉: 将待成像的动物放入麻醉箱中进行气体麻醉(常用异氟烷),待动物完全麻醉后,移至成像腔内的温控平台。麻醉过程中需监测动物呼吸,确保安全。
  2. 底物/探针给药:
    • 生物发光: 腹腔注射或静脉注射D-荧光素底物。通常在注射后5-15分钟(根据酶的类型和动力学)进行成像,等待底物在体内充分分布并与酶反应达到发光高峰。
    • 荧光: 根据实验设计,通过静脉注射、口服、局部涂抹等方式给予荧光探针。在探针充分分布并结合到靶标后进行成像。
  3. 定位与摆放: 将麻醉后的动物在成像平台的指定位置摆放整齐,确保成像区域完全位于视野内,且动物身体平坦,减少体位对光信号的影响。系统通常有多个动物成像托盘,可以一次性放置多只动物。
  4. 图像采集:
    • 在软件界面选择相应的成像模式和参数。
    • 选择合适的滤光片(如果需要)。
    • 进行实时预览,调整焦距和视野。
    • 设定曝光时间(从几秒到几分钟,取决于信号强度)。
    • 点击“采集”或“拍照”按钮,系统将自动捕获图像。
    • 对于三维成像,系统会通过多角度或多波长采集数据,并通过算法重建。
  5. 数据保存: 每次成像后,将原始图像和数据文件保存到指定目录,并做好详细标记,包括动物编号、日期、时间、实验组别等信息。
  6. 动物恢复: 成像结束后,将动物从成像腔中取出,放置于温暖、干净的恢复笼中,直至完全苏醒并能自由活动。

数据分析与结果呈现

ivis系统自带的专业分析软件是数据解读的关键。

  • 图像叠加: 将光学信号图像(伪彩图,代表信号强度)叠加到灰度解剖图像(可见光图像,代表动物形貌)上,以便直观定位信号来源。
  • 区域选择 (Region of Interest, ROI): 在图像上圈选感兴趣的区域(如肿瘤部位、器官区域),对该区域内的光信号进行定量分析。
  • 信号量化: 最常用的量化指标是光子通量(Photon Flux),单位通常为p/s/cm²/sr(photon/second/cm²/steradian)。该值反映了单位时间、单位面积、单位立体角内发出的光子数量,可以用来比较不同时间点或不同组别间的信号强度差异。
  • 光谱分离与多色成像: 对于多色荧光成像,软件可以通过光谱解混算法分离不同波长的荧光信号,避免交叉干扰。
  • 三维重建与量化: 对于具有三维成像功能的系统,软件可以重建信号在体内的三维分布,并进行体积和深度的量化。
  • 数据导出与统计分析: 量化数据通常可以导出为表格形式,用于GraphPad Prism、Excel等软件进行统计学分析和图表绘制。

购置与运行成本“几何”?

购置和运行一套ivis成像系统是一项显著的投入,其成本涉及多个方面,且因品牌、型号、配置和使用频率而异。

初始购置成本

ivis成像系统的价格范围非常广,从几十万元人民币到数百万元人民币不等。

  • 入门级系统: 约在50万 – 100万元人民币,通常功能相对基础,主要支持生物发光成像,荧光通道较少,软件功能可能也较简单。适合资金有限或初次引入的实验室。
  • 中高端系统: 约在100万 – 250万元人民币,这是市场上的主流选择。具备多个荧光激发和发射通道,更高灵敏度的相机,更强大的分析软件(如支持三维成像),以及更完善的动物管理系统(多动物托盘、气体麻醉集成)。
  • 顶级系统: 250万元人民币以上,甚至高达400-500万元人民币。这类系统通常配备最先进的EMCCD相机,超宽光谱范围,多光谱成像功能,高度集成化的自动化操作,以及最强大的三维重建和多模态图像融合能力,满足最前沿和复杂的科研需求。

影响初始成本的因素:

  • 相机类型和灵敏度: EMCCD相机通常比标准CCD相机更昂贵,但灵敏度更高。
  • 成像模式: 支持的荧光通道数量越多,价格越高。
  • 三维成像功能: 具备三维重建功能的系统通常价格更高。
  • 自动化程度: 自动化麻醉、自动滤光片切换等功能会增加成本。
  • 品牌和服务: 知名品牌通常有更高的溢价,但也能提供更可靠的质量和售后服务。
  • 附件和配套设备: 如额外的麻醉机、气体钢瓶、专用动物托盘、电脑工作站等。

运行与维护成本

除了初始购买费用,ivis系统的日常运行和维护也需要持续的投入。

  • 耗材费用:
    • 荧光素酶底物: D-荧光素是生物发光成像的必需品,价格不菲,特别是进行大量动物实验时,成本显著。
    • 荧光探针: 各种特异性荧光染料和探针价格从几百到几千元不等。
    • 动物模型: 购买或饲养实验动物(如免疫缺陷鼠、转基因鼠)的费用。
    • 麻醉气体: 异氟烷等气体麻醉剂的消耗。
    • 其他: 注射器、针头、手套、酒精等常规实验室耗材。
  • 维护与服务:
    • 年度维护合同: 许多厂商提供年度维护合同,确保设备的正常运行和及时维修,费用通常是设备价格的5%-10%。
    • 零部件更换: 相机、滤光片、光源等关键部件的寿命有限,更换成本高昂。
    • 软件升级: 软件版本更新可能需要额外付费,以获取新的功能和优化。
  • 人员培训: 操作ivis系统需要专业知识和技能,人员培训也需要投入时间和资源。
  • 动物饲养: 动物房的运行成本(饲料、垫料、人工等)。

总体而言,ivis成像系统是一项长期的战略性投资,需要在购置前充分评估实验需求、预算以及未来几年的运行和维护开销。

ivis成像系统的局限性与挑战

尽管ivis成像系统功能强大,但它并非万能,在实际应用中仍存在一些固有的局限性和挑战。

光信号的衰减与散射

这是所有光学成像技术在活体应用中面临的核心问题。生物组织(如皮肤、肌肉、脂肪、血液)对光具有吸收和散射作用,导致:

  • 穿透深度有限: 可见光和近红外光在组织中的穿透深度有限。生物发光和荧光信号强度会随着组织深度增加而迅速衰减,因此对深部器官(如大脑深层、心脏、胰腺)的信号检测灵敏度会显著降低。通常,ivis对浅表或容易被光穿透的部位(如皮下肿瘤)成像效果最佳。
  • 空间分辨率受限: 光在组织内发生散射,导致信号扩散,使得图像边缘模糊,难以精确分辨微小结构或相邻的信号源。因此,ivis的空间分辨率通常在毫米级别,无法达到微米级的细胞水平。
  • 定量准确性影响: 组织类型、厚度、色素含量等因素都会影响光的吸收和散射,导致位于不同深度或不同组织环境中的相同强度信号,在体外检测时可能表现出不同的表面光子通量,从而影响定量结果的准确性。

背景信号与信噪比

  • 自发荧光: 活体组织中存在内源性的自发荧光物质(如胶原蛋白、NAD(P)H、黄素蛋白),尤其在可见光和短波长荧光范围内,这些自发荧光会产生背景信号,降低信噪比,干扰外源荧光探针的检测。
  • 血红蛋白吸收: 血液中的血红蛋白对可见光有较强的吸收,会进一步衰减光信号,影响成像质量。

报告基因与探针的局限

  • 荧光素酶底物依赖: 生物发光成像需要额外注射底物,底物的体内分布、代谢和清除速度会影响信号的动力学和持续时间。
  • 基因表达水平: 报告基因的表达水平需要足够稳定且高,才能产生可检测的信号。如果表达过低,可能无法检测到信号;过高则可能饱和。
  • 探针特异性与稳定性: 荧光探针的选择需要考虑其靶向特异性、在体内的稳定性、生物相容性以及清除速度。非特异性结合或快速降解都会影响结果。

伦理与法规挑战

  • 动物福利: 尽管ivis是非侵入性的,但动物在实验过程中仍需麻醉和处理。长期纵向研究需要更加关注动物的健康和福利,遵守严格的动物实验伦理规范。
  • 数据解读: ivis数据是光学信号的间接测量,其与真实生物事件的关联需要严谨的验证和校准。单一的ivis数据有时无法提供足够全面的生物学信息,常需要结合其他体内外实验数据进行综合分析。

成本考量

如前所述,ivis系统的购置和运行成本较高,对于预算有限的实验室来说,是一项不小的挑战。

“如何”选择适合的ivis成像系统?

选择一款合适的ivis成像系统,需要综合考虑实验室的科研需求、预算、技术支持以及未来的发展潜力。以下是一些关键的考量因素:

1. 明确科研需求与应用场景

  1. 主要成像模式: 您的研究主要依赖生物发光还是荧光?如果仅需生物发光,入门级系统可能足以满足。如果需要多色荧光成像,则需要更多激发光源和滤光片通道的系统。
  2. 研究对象的深度: 您的靶标位于体内深部还是浅表?如果位于深部,可能需要更高灵敏度的相机和更好的三维重建算法。近红外荧光探针比可见光探针穿透更深,因此,支持近红外通道的系统可能更适合深部成像。
  3. 信号强度: 您的报告基因表达水平预计是高还是低?如果信号非常微弱,就需要超高灵敏度的EMCCD相机。
  4. 通量需求: 您需要同时成像多少只动物?系统是否支持多动物成像托盘?高通量需求意味着需要更大的成像箱和高效的动物麻醉管理系统。
  5. 三维信息需求: 您是否需要了解信号的精确三维定位和深度信息?如果是,则需要具备DLT/DFT功能的系统。
  6. 多模态兼容性: 未来是否可能与其他成像模态(如CT、MRI)进行图像融合?选择支持DICOM等通用图像格式导出的系统,有助于未来的多模态研究。

2. 评估系统性能与技术参数

  • 相机灵敏度: 这是核心参数,通常以量子效率(QE)和信噪比(SNR)来衡量。高量子效率和低噪声(如深度冷却)的相机能捕获更微弱的信号。
  • 空间分辨率: 通常用最小可分辨距离表示,但如前所述,活体光学成像的空间分辨率有限,更多是考量图像的清晰度和细节捕捉能力。
  • 光谱范围与滤光片: 考察系统支持的激发/发射波长范围,以及可配置的滤光片数量和类型,是否能满足您的多色成像需求。
  • 曝光时间范围: 系统支持的曝光时间范围,从毫秒到分钟,决定了其适应不同信号强度的能力。
  • 动物管理系统: 考察麻醉设备的集成度、气体流量控制精度、温控平台的稳定性、以及是否有多个麻醉接口和动物托盘。
  • 软件功能: 强大的软件是ivis系统价值的体现。考察其图像采集、处理、量化(光子通量、ROI分析)、三维重建、多光谱分离、数据导出等功能是否满足需求,以及用户界面是否友好。

3. 预算与成本效益

  • 初始购置成本: 根据预算选择合适的型号和配置。考虑是购买全新的系统还是购买二手设备(后者风险较高,需谨慎)。
  • 长期运行成本: 预估耗材(底物、探针、动物)和维护费用。询问供应商关于年度维护合同和主要部件的保修政策。
  • 性价比: 并非最贵的系统就最好。选择在满足科研需求前提下,性价比最高的方案。

4. 品牌、服务与支持

  • 品牌声誉: 市场上有多个ivis系统品牌,如PerkinElmer (IVIS系列)、Caliper (已并入PerkinElmer)、Bruker (In-Vivo Xtreme)、Berthold Technologies等。了解其市场口碑、技术实力和研发投入。
  • 技术支持与售后服务: 考察供应商在安装、调试、培训、故障排除方面的响应速度和专业程度。是否有本地化的技术支持团队?提供哪些培训课程?
  • 用户群体与交流: 了解是否有活跃的用户社区或论坛,可以获取经验分享和问题解答。

5. 系统可升级性

考虑未来科研方向可能的变化,选择一个具有良好可升级性(如增加荧光通道、升级相机、软件更新等)的系统,有助于延长设备的使用寿命和满足未来的研究需求。

通过对以上因素的全面考量和比较,实验室可以选择到最适合自身科研目标和预算的ivis成像系统,从而高效地推动生命科学研究的进展。